Comparison of propagation method in in vitro and in vivo condition of Lonicera caerulea L.
Ładowanie...
Pliki
Data
2017
Tytuł czasopisma
ISSN czasopisma
Tytuł tomu
Wydawca
Wydawnictwo Uczelniane Zachodniopomorskiego Uniwersytetu Technologicznego w Szczecinie
Abstrakt
The aim of the study was to determine the effectiveness of rooting of blue honeysuckle
of ‘Wojtek’ cultivar in vitro. Moreover, suitability of different soil substrate for rooting the lignified
herbaceous cuttings in vivo was evaluated. The process of disinfection was the decisive factor in
the process of preparing the explants for the propagation. Among the disinfection solutions used
for sterilization of ‘Wojtek’ microshoots, the best results were obtained after application of 10%
NaOCl solution. Initiation and propagation of blue honeysuckle proceed with the highest efficiency
in Murashige and Skoog (MS) medium, and no positive effect of BAP cytokine on this process
was reported. Proper selection of composition of the medium guaranteed high performance of
rooting of explants in vitro – lack of plant growth regulators (PGRs) in MS medium led to
a decrease in the percentage of rooted plants. The addition of auxins to MS medium had
a stimulating effect on plant height, length, and number of roots. In the greenhouse, four-node
lignified cuttings in the medium prepared with perlite and peat were rooted with the highest
performance. Rooting of lignified herbaceous cuttings in the substrate prepared with peat and
perlite stimulated the development of the root system as well. The worst influence for rooted
cuttings was observed in sand.
Celem badań było określenie efektywności ukorzeniania jagody kamczackiej ‘Wojtek’ w kulturach in vitro. Ponadto określono wpływ sposobu cięcia sadzonek zdrewniałych i zielnych na ukorzenianie w różnych podłożach w warunkach in vivo. Decydującym etapem przygotowania eksplantatów do namnażania jest etap dezynfekcji. Jeśli chodzi o użyte w doświadczeniu środki dezynfekujące, najlepsze efekty uzyskano po zastosowaniu 10% podchlorynu sodu (NaOCl). Najlepszą pożywka do inicjacji i namnażania eksplantatów pędowych jagody kamczackiej ‘Wojtek’ była pożywka według składu Murashige i Skoog (MS). Natomiast nie zaobserwowano pozytywnego wpływu cytokininy BAP na proces inicjacji i namnażania pędów in vitro. Brak roślinnych regulatorów wzrostu w pożywce ukorzeniającej miał hamujący wpływ na procent ukorzenionych roślin jagody kamczackiej. Natomiast dodatek auksyny IBA do pożywki MS dodatnio wpływał na wysokość roślin, długość i liczbę korzeni. W warunkach szklarniowych największy procent ukorzenionych roślin otrzymano z 4-pędowych zdrewniałych sadzonek. Najlepszym podłożem do ukorzeniania okazał się perlit w połączeniu z torfem. Najgorsze efekty obserwowano w przypadku pędów ukorzenianych w piasku.
Celem badań było określenie efektywności ukorzeniania jagody kamczackiej ‘Wojtek’ w kulturach in vitro. Ponadto określono wpływ sposobu cięcia sadzonek zdrewniałych i zielnych na ukorzenianie w różnych podłożach w warunkach in vivo. Decydującym etapem przygotowania eksplantatów do namnażania jest etap dezynfekcji. Jeśli chodzi o użyte w doświadczeniu środki dezynfekujące, najlepsze efekty uzyskano po zastosowaniu 10% podchlorynu sodu (NaOCl). Najlepszą pożywka do inicjacji i namnażania eksplantatów pędowych jagody kamczackiej ‘Wojtek’ była pożywka według składu Murashige i Skoog (MS). Natomiast nie zaobserwowano pozytywnego wpływu cytokininy BAP na proces inicjacji i namnażania pędów in vitro. Brak roślinnych regulatorów wzrostu w pożywce ukorzeniającej miał hamujący wpływ na procent ukorzenionych roślin jagody kamczackiej. Natomiast dodatek auksyny IBA do pożywki MS dodatnio wpływał na wysokość roślin, długość i liczbę korzeni. W warunkach szklarniowych największy procent ukorzenionych roślin otrzymano z 4-pędowych zdrewniałych sadzonek. Najlepszym podłożem do ukorzeniania okazał się perlit w połączeniu z torfem. Najgorsze efekty obserwowano w przypadku pędów ukorzenianych w piasku.
Opis
Słowa kluczowe
blue honeysuckle, herbaceous and lignified cuttings, micropropagation, PGRs, jagoda kamczacka, sadzonki zielne i zdrewniałe, mikrorozmnażanie, PGR
Cytowanie
Krupa-Małkiewicz M., Ochmian I., Smolik M. Ostrowska K.M. (2017). Comparison of propagation method in in vitro and in vivo condition of Lonicera caerulea L. Folia Pomer. Univ. Technol. Stetin., Agric., Aliment., Pisc., Zootech., 334(42)2, 79–88. doi 10.21005/AAPZ2017.42.2.09